一、实验室安全事项

1、化学实验注意事项。

2、生物实验注意事项。

3、国内外实验室事故案例与原因。

 

二、生物、医学实验

1、聚合物表面细胞形态分析
2、MTT实验
3、核酸、蛋白电流
4、实时定量PCR
5、碱性磷酸酶检测
6、共聚焦显微镜免疫荧光分析
7、钙沉积染
8、生物矿化实验
9、组织细胞固定方法
10、动物模型

 

三、化学、材料实验

1、手套箱使用方法

2、转矩流变仪使用方法

3、扫描电镜测试方法

4、透射电镜测试方法

5、GPC测试流程

 

 

常用动物模型

 

一、桡骨缺损模型:

 实验动物:新西兰兔或日本大白兔

 实验操作:

1. 动物麻醉:生理盐水与鹿眠灵按照1:24 稀释25倍后,约0.6-0.8ml/kg剂量肌肉注射。

2. 兔桡骨缺损模型的建立:

(1)双侧前肢备皮后,将兔置于腹卧位,四肢外展固定于手术台上,强力碘消毒双侧前肢,铺无菌巾。

(2)沿前臂桡骨中下段纵切长约3-3.5cm的切口,钝性分离皮下组织、筋膜、肌肉;

(3)分离切开骨膜后,沿骨膜下分离暴露桡骨;

(4)以距桡骨远端约1cm为远端切割点,往近侧20mm为近端切割点,画样并切割;

(5)取出桡骨中下段20mm 的节段性骨缺损,修整肢体两侧断端并压迫止血。

3. 材料植入:

(1)缺损处经生理盐水冲洗,去除血凝块。

(2)将不同组别的材料分别植入缺损处,注意材料与骨断端处应无肌肉或其他软组织嵌入。

(3)空白对照组为缺损不作任何处置。

(4)分层缝合创口,对合皮肤,强力碘消毒。

(5)在术后1周内,每只兔每天肌注青霉素40万单位。

 注意事项:

1.钝性分离时,尽可能不破坏皮层及肌层的静脉血供,注意避免伤及动脉。

2.电钻磨取骨缺损时,将周围骨膜一并摘取。

3.实验动物须随机分组,每只兔左右桡骨分别植入不同材料,最好交叉设计。

 

二、颅骨缺损

(待续...)

 

三、胫骨平台缺损

(待续...)